1材料與方法
1.1材料
1.1.1毒株、質(zhì)粒及細胞
rSA14：SA14株病毒的感染性克隆株，rJEV?EI176R：rSA14株病毒的E蛋白176位點突變?yōu)镽的毒株，2株病毒均由四川農(nóng)業(yè)大學(xué)動物醫(yī)學(xué)院豬病研究中心周于用碩士構(gòu)建保存(Zhou et al.,2018b)。JEV感染性克隆質(zhì)粒(pACYC-JEV-SA14/U14163)由中科院武漢病毒研究所張波研究員贈送。大腸桿菌(Escherichia coli)DH5α感受態(tài)細胞購自擎科生物科技有限公司(北京)。非洲綠猴腎細胞(Vero)、人星形膠質(zhì)細胞(U-251)、小鼠小膠質(zhì)細胞(BV-2)、倉鼠腎細胞(BHK-21)均購自美國菌種保藏中心。
1.1.2主要試劑
PrimeScript RT reagent Kit with gDNA Easer、2×PrimeSTAR Max Premix、DL2000 DNA Marker購自寶生物工程有限公司(大連)；qPCR SYBR MasterMix購自翊圣生物科技有限公司(上海)；2×Seam‐less Cloning Mix購自博邁德基因技術(shù)有限公司(北京)；HRP-羊抗鼠IgG、HRP-羊抗兔IgG購自博士德生物工程有限公司(武漢)；DMEM、胎牛血清購自Gbico公司(美國)；E蛋白多克隆抗體(工作濃度為1∶500,50 kD)和NS3蛋白多克隆抗體(工作濃度為1∶200,64 kD)均由本實驗室制備保存，GAPDH抗體(工作濃度1∶5000,37 kD)購自三鷹生物技術(shù)有限公司(武漢)，ColorMixed Protein Marker 180(10~180 kD)購自愛博泰克生物(武漢)。
1.2方法
1.2.1 rJEV-EI176R毒株E基因擴增
分別取500μL病毒液按病毒RNA快速抽提試劑盒說明書(生工生物工程有限公司,上海)進行操作得到RNA，隨后反轉(zhuǎn)錄得到cDNA。根據(jù)NCBI數(shù)據(jù)庫中JEV SA14毒株E基因序列(GenBank No.U14163.1)，使用CE Design V1.04設(shè)計擴增E基因引物(表1)，由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。以cDNA為模板，PCR擴增E基因片段的反應(yīng)體系(25μL)：cDNA 2μL，PrimeSTAR Max DNA Poly‐merase 12.5μL，上下游引物(10μmol/L)各1μL，ddH2O補足25μL。PCR反應(yīng)程序：98℃3 min；98℃20 s，55℃30 s，72℃20 s，35個循環(huán)；72℃延伸5 min。PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳鑒定。
1.2.2 rJEV-EI176R的生物信息學(xué)分析
將1.2.1擴增出來的PCR產(chǎn)物送至生工生物工程有限公司(上海)進行測序，并使用DNAMAN 6軟件進行序列比對。運用SOPMA在線預(yù)測工具對蛋白二級結(jié)構(gòu)進行預(yù)測分析。利用ExPASy ProtParam tool在線分析軟件對E基因翻譯后的氨基酸序列進行分析。利用Pymol2.3作圖展示蛋白的176位點的不同氫鍵連接方式。同時利用PolyPhen 2預(yù)測蛋白質(zhì)突變的性質(zhì)。
1.2.3 rJEV-EI176R病毒株生長特性測定
1.2.3.1熒光定量標準曲線的建立
用質(zhì)粒PIRES2-EGFP-E做標準品，用分光光度計測量濃度后，依次按10倍梯度稀釋用作模板。按照引物設(shè)計原則，使用NCBI在線設(shè)計E基因的熒光定量引物(表1)，以GAPDH為內(nèi)參基因，引物均由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。qP‐CR反應(yīng)體系20μL：10μL SYBR Green Mix，上下游引物(10μmol/L)各0.4μL，模板1μL，8.2μLddH2O。使用實時熒光定量PCR儀(Roche,瑞士)進行檢測，反應(yīng)程序：95℃2 min；95℃10 s，60℃30 s，共40個循環(huán)。
1.2.3.2生長曲線測定
BV-2細胞接種T75細胞瓶，待細胞鋪滿單層后，將JEV rSA14和rJEV-EI176R病毒株以相同感染復(fù)數(shù)(MOI=0.01)分別接種細胞，設(shè)置3個重復(fù)，37℃培養(yǎng)箱中孵育1.5 h，棄去病毒液，加入20 mLDMEM(2%FBS)維持液，于感染后0、12、24、36、48、60和72 h收集500μL細胞上清液，運用bioscreen生長曲線分析儀測定病毒E基因拷貝數(shù)，繪制病毒生長曲線，比較突變株、親本株病毒在BV-2細胞上的生長特性差異。
1.2.3.3蝕斑試驗
將BHK-21細胞鋪至6孔板中，待孔中細胞融合度達到90%時進行病毒液接種。將JEV rSA14和rJEV-EI176R病毒液按10倍梯度依次稀釋10-1、10-2、10-3、10-4、10-5和10-6，并用PBS將孔中細胞潤洗3次后接種10-4、10-5和10-6病毒混懸液，每孔200μL劑量，37℃培養(yǎng)1.5 h后棄去病毒混懸液，加入1.25%的甲基纖維素，于37℃培養(yǎng)箱放置4 d后用結(jié)晶紫染色20~30 min，用自來水輕輕沖去染液便可觀察空斑大小。
1.2.3.4 rJEV-EI176R病毒株在細胞上的增殖試驗取無菌爬片依次放入12孔細胞培養(yǎng)板中，接種細胞，待細胞長成均勻的單層后，將突變株、親本株病毒以相同的感染復(fù)數(shù)(MOI=1)分別接種BV-2細胞，設(shè)置3個復(fù)孔，陰性對照不加病毒。分別于感染后48 h棄去培養(yǎng)液，用預(yù)冷的PBS洗滌3次后用4%的多聚甲醛固定0.5 h，再用PBS洗滌3次，用0.1%的曲拉通-100通透0.5 h后用PBS洗滌3次，再用IFA封閉液封閉2 h，加入500μL NS3蛋白多克隆抗體，4℃孵育過夜。用Tris-HCl+Tween緩沖鹽溶液(tris-buffered saline and tween 20,TBST)洗滌后，加入500μL異硫氰酸熒光素(fluorescein iso‐thiocyanate isomer,FITC)標記的羊抗兔二抗孵育40 min，PBS洗滌4次，每次5 min。最后運用4',6-二脒基-2-苯基吲哚(4',6-diamidino-2-phenylindole,DAPI)染料對細胞核進行染色，用無色指甲油進行封片。完成后，運用奧林巴斯BX63熒光顯微鏡拍照觀察。
1.2.3.5 rJEV-EI176R病毒對細胞的吸附試驗
BV-2細胞、U-251細胞、Vero細胞和BHK-21細胞接種6孔細胞培養(yǎng)板，待細胞長滿單層后，突變株與親本株病毒以相同的感染復(fù)數(shù)(MOI=10)分別接種于細胞，設(shè)置3個復(fù)孔，在4℃孵育1 h，用PBS洗去未吸附的病毒，提取細胞總RNA后反轉(zhuǎn)錄成cDNA。按照引物設(shè)計原則，使用NCBI在線設(shè)計E基因的熒光定量引物(表1)，引物均由生工生物工程(上海)股份有限公司合成，以GAPDH為內(nèi)參基因，qPCR反應(yīng)體系20μL：10μL SYBR Green Mix，上下游引物(10μmol/L)各0.4μL，模板1μL，8.2μLddH2O。反應(yīng)程序：95℃2 min；95℃10 s，60℃30 s，共40個循環(huán)。
1.2.4 rJEV-EI176R病毒誘導(dǎo)BV-2細胞炎性水平差異檢測
生長狀態(tài)良好的BV-2細胞生長至80%~90%，分別感染突變株和親本株病毒，感染后24 h收集樣品，設(shè)置3個復(fù)孔。運用qPCR檢測IL-6、TNF-α、IP-10細胞因子轉(zhuǎn)錄表達情況。引物信息見表1，以GAPDH為內(nèi)參基因，用qPCR檢測細胞因子轉(zhuǎn)錄的mRNA的水平，反應(yīng)體系和反應(yīng)程序同1.2.3。
1.2.5統(tǒng)計學(xué)分析
所有實驗結(jié)果均由3次重復(fù)所得，采用Graph‐pad Prim 9.1軟件對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計學(xué)分析和作圖，采用t檢驗分析差異顯著性。
乙腦病毒株囊膜蛋白I176R位點在BV-2細胞上的生長特性差異——摘要、前言
乙腦病毒株囊膜蛋白I176R位點在BV-2細胞上的生長特性差異——材料與方法
乙腦病毒株囊膜蛋白I176R位點在BV-2細胞上的生長特性差異——結(jié)果與分析
乙腦病毒株囊膜蛋白I176R位點在BV-2細胞上的生長特性差異——討論、結(jié)論
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