2.5.最小抑菌濃度(MIC)和最小殺菌濃度(MBC)


采用MTT法測定細菌細胞的增殖。簡言之,將細菌細胞(10^6 CFU/mL)以200μL/孔接種到96孔微孔板中的Mueller-Hinton肉湯中。將貫葉連翹提取物的兩倍系列稀釋液加入到含有細菌細胞的孔中。在37°C培養(yǎng)24小時后,每個濃度進行三次重復(fù)測定(n=3)。24小時后,向每孔加入10μL MTT(5 mg/mL)試劑,并將板在37°C下孵育4小時。然后,加入DMSO(100μL)終止反應(yīng),輕輕搖晃板以重新溶解形成的晶體。使用Synergy 4微孔板讀數(shù)儀(BioTek Instruments,Winooski,VT,USA)測量每孔的吸光度。所有結(jié)果表示為細胞增殖抑制率,計算公式為[(A-B)/A]x 100%,其中A和B分別為對照組和樣品組的平均活菌數(shù)。MIC是抑制任何可見生長的測試樣品的最低濃度。


MBC定義為殺死99.9%細菌接種物的最低濃度,通過將來自微孔板各孔的20μL培養(yǎng)物重新接種到Mueller-Hinton瓊脂平板上確定。在37°C培養(yǎng)18小時后,通過肉眼觀察瓊脂平板上的細菌生長情況確定MBC。所有MIC和MBC測量至少重復(fù)進行兩次。


2.6.時間-效應(yīng)關(guān)系測定


在含有補充了5 mg/mL、10 mg/mL和20 mg/mL貫葉連翹提取物的新鮮制備的Mueller-Hinton肉湯的孔中,接種10^6 CFU/mL的藤黃微球菌,并在37°C培養(yǎng)。每小時通過自動測量600 nm處的吸光度(Bioscreen C,Labsystems,Helsinki,Finland)測定藤黃微球菌細胞的吸光度。


2.7.貫葉連翹提取物對藤黃微球菌細胞蛋白質(zhì)的影響


用貫葉連翹提取物(5 mg/mL、10 mg/mL和15 mg/mL)培養(yǎng)8小時后,收集藤黃微球菌細胞(10^6 CFU/mL),并使用超聲波方法提取總蛋白。然后,將樣品與等體積的上樣緩沖液混合,并通過12%SDS-PAGE進行分離。電泳后,用考馬斯亮藍(CBB)染色蛋白質(zhì),以檢查藤黃微球菌細胞中的蛋白質(zhì)組成。使用odyssey(Li-Cor,USA)對凝膠進行拍照。


2.8.流式細胞術(shù)


用貫葉連翹提取物(5 mg/mL、10 mg/mL和15 mg/mL)處理藤黃微球菌細胞。8小時后,收獲藤黃微球菌細胞,并根據(jù)制造商的建議(天津華大基因生物技術(shù)有限公司,中國),在室溫下避光用異硫氰酸熒光素(FITC)-Annexin V和碘化丙啶(PI)染色15分鐘。使用配備CellQuest軟件(BD Biosciences)的流式細胞儀(FACScan;BD Biosciences)分析細胞。將細胞分為活細胞、壞死細胞、早期凋亡細胞和晚期凋亡細胞。計算早期和晚期凋亡細胞的相對比例以進行進一步比較。該實驗重復(fù)超過三次。


2.9.TUNEL測定


使用凋亡原位檢測試劑盒(Promega,Germany),通過末端脫氧核苷酸轉(zhuǎn)移酶(TdT)介導(dǎo)的dUTP缺口末端標記法,對凋亡細胞中DNA片段的3'-OH進行標記和染色,按照制造商的說明進行。使用熒光顯微鏡(Olympus,FV1000,Japan)捕獲熒光素標記的TUNEL陽性細胞的圖像。此外,TUNEL測定作為流式細胞術(shù)的補充方法進行,以比單獨流式細胞術(shù)更準確地證明凋亡水平。細胞核用DAPI(Invitrogen,Molecular Probes,Eugene,OR)標記為藍色,缺口末端標記為綠色。細胞核(藍色)和缺口末端(綠色)標記之間的合并顯示為紫色。


2.10.DNA Laddering測定


將藤黃微球菌細胞(10^5 CFU/mL)與貫葉連翹提取物(5 mg/mL、10 mg/mL和15 mg/mL)一起培養(yǎng)8小時。然后使用凋亡Ladder檢測試劑盒(Beyotime,China)提取藤黃微球菌細胞的基因組DNA。然后將DNA在1.0%瓊脂糖凝膠中進行電泳,并通過溴化乙錠(EB)染色顯影。在紫外光下對凝膠進行拍照。


2.11.貫葉連翹提取物對膜電位的影響


將藤黃微球菌細胞與貫葉連翹提取物(5 mg/mL、10 mg/mL和15 mg/mL)在37°C下培養(yǎng)。八小時后,收集細胞,用冷PBS洗滌兩次,用Rhodamine 123(Sigma,Germany)在37°C下染色30分鐘,然后通過FACScanto(BD Biosciences)進行分析。


2.12.統(tǒng)計分析


所有數(shù)據(jù)表示為平均值±標準誤(SE),所有統(tǒng)計分析均使用SPSS 17.0統(tǒng)計軟件包(SPSS Inc.,Chicago,IL,USA)進行。此外,p<0.05被認為具有統(tǒng)計學(xué)顯著性。


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